如何进行组织培养？

晕，你的抗性愈伤组织，它有什么抗性，它不是抗菌的吗？ 抗性愈伤组织应进行筛选。 一般来说，它是 kan 筛选。

我想你忍不住了。 我们通常会多加一些头孢菌素，加多少。 这取决于配置中土壤包霉素的浓度。

但是，这通常是在配置介质以防止它时添加的，并且不容易使已经生长细菌的细菌过多。 我担心细菌会侵入愈伤组织。 当时，当我做的时候，教练说，远离细菌的老茧可以保存下来。

如果是真菌，整个培养基基质的愈伤组织将不起作用。

抗生素一般加用kan，cef（头孢菌素）。 还有一个，我记不清了。

我不知道你的这个老茧对酒精有多敏感，我以前没有用过，我想我可以用酒精在短时间内杀死细菌。 半分钟就够了。

如果要配置生根培养基，主要看生长素的比例，一般NAA、6 BA、IAA可以促进生根。 IAA的作用更强。 然而，这与浓缩比和植物的类型以及植物培养组织的位置有很大关系。

通常，它们是在自己的实验中发现的。

1.我建议用无菌水清洗材料，将其浸泡在一升水银中，然后用无菌水清洗，用滤纸吸干，然后继续培养。

2.我没有做过玉米。

可以添加两种以上的抗生素来抑制微生物的生长，浓度取决于添加的抗生素;

第二个不太清楚。

（1）器皿消毒。 在组织培养之前，玻璃器皿应用洗衣粉清洗以备后用。 接种室和超净工作台用70%酒精擦洗，并用紫外线照射。 其他器皿也应在高温下消毒。

2）培养材料的收集。组织培养中使用的植物材料可以是根、茎、叶、花、芽和种子的部分子叶、下胚轴的一部分，有时还有花粉或花药。 一般来说，应取年轻和年轻的材料，这些材料在进入培养基时必须保持新鲜，否则组织培养会失败。

3）培养物的消毒。首先，用自来水冲洗收集的材料，然后用蒸馏水冲洗2-3次，然后用无菌纱布吸收材料上的水分，切成小块，在70%酒精中浸泡15-30秒，然后在30%漂白粉澄清剂中浸泡20分钟进行消毒，最后用无菌水冲洗3-5次。

4）外植体的制备。将上述灭菌材料用刀、剪刀、镊子在火焰上灭菌，在灭菌滤纸上剥去芽的鳞片、枝条的外皮、种皮的胚乳，然后切成小块的长度（这些小块是外植体）。 操作过程中严禁用手触摸这些材料。

5）接种培养。在无菌条件下立即将切割的外植体接种在培养基上。 接种后，使用的试管和三角瓶应用无菌棉絮密封，放在培养室的培养架上。

每天 12-16 小时使用荧光灯。 保持在 25 20。也可以使用变温培养，夜间温度略低于白天。

外植体选择、消毒和芽尖接种。

4月春季，已经开始萌发的枝条，即芽肿且芽鳞尚未开裂时，以11-93茎尖为外植体，切成有生长点的茎段，剥去韧皮部后，用70%酒精浸泡1分钟，转移到溶液中消毒5-7分钟， 然后用无菌水冲洗三次，在无菌条件下，剥去毫米的生长点进行接种。

亚文化。 生长点接种MS+培养基，光照强度为3000 lux，白天温度为25-28，夜间温度为18-20，光照时间约为10 h，芽尖在10-15 d内膨大，生长迅速，分化增殖，培养约60 d后，每个生长点可形成10个以上芽簇， 然后转移到MS+的生长培养基中。为了加快繁殖速度，可以增加GA的量，使其经过多次子切割和培养。 经过6次代后，一个生长点的繁殖系数可达500倍左右，可长成一簇株高2-3厘米的幼苗。

1992年，嫁接了22个茎尖，培育了10000多株试管幼苗。 无根幼苗，平均株高厘米，茎粗厘米。

根的诱导。 1993年2月，将无根幼苗连续剪下，高度约2 cm，转入1 2ms+。 1/2ms+；1/2ms+；1/2ms+；1/2ms+；1/2ms+；生根率分别为1 2ms+、1 2ms+和1 2ms+。 经过对比试验，选择了最佳生根培养基，即1 2ms+。 试管幼苗的生根率是直接影响组织培养幼苗移栽成功与否的基础，大量的试管幼苗也能长出强壮优质的根系，1993年共有5351根。

图8 舌关节。

1.接穗 2砧木 3关节。

1.如果呈绿色，有恶臭，很可能是细菌污染，如铜绿假单胞菌，抗性强，难以去除。

2.浅色表示胡萝卜素失活，原因也可能是感染，如支原体感染; 或化学污染。

3.熟练操作，污染主要是操作的技术问题，无菌操作台不能保证完全无菌，因此制定良好且规范的无菌操作流程。

1.培养基是绿色的，制备培养基时是否调整了pH值？ 感染的可能性也很高。

2.植物组织培养是其愈伤组织的死胡同，颜色会褪色。

3.主要是操作问题，在洁净室或洁净工作台中操作，并用酒精对桌子进行消毒。 组织块应接种在靠近酒精灯的地方。 锥形瓶口应通过酒精灯2至3次，接种完成后应关闭锥形瓶口。